NADH-ubichinona oxidoreductaza | |
---|---|
| |
Identificatori | |
Cod KF | 7.1.1.2 |
Baze de date de enzime | |
IntEnz | Vedere IntEnz |
BRENDA | intrare BRENDA |
ExPASy | Vedere NiceZyme |
MetaCyc | cale metabolică |
KEGG | intrare KEGG |
PRIAM | profil |
Structuri PDB | RCSB PDB PDBe PDBj PDBsum |
Ontologie genetică | AmiGO • EGO |
Căutare | |
PMC | articole |
PubMed | articole |
NCBI | proteine NCBI |
Fișiere media la Wikimedia Commons |
Complexul NADH dehidrogenază , numit și complexul I sau NADH ubichinonă oxidoreductază , este primul complex multiproteic al lanțului respirator de transport de electroni . Multe copii ale complexului sunt localizate în membranele organismelor procariote capabile de respirație cu oxigen și în membranele interioare ale mitocondriilor celulelor eucariote . În legătură cu proteinele umane, complexul I este adesea denumit NADH dehidrogenază .
Acest complex joacă un rol central în procesele de respirație celulară și fosforilare oxidativă : aproape 40% din gradientul de protoni pentru sinteza ATP este creat de acest complex [1] . Complexul I oxidează NADH și reduce o moleculă de ubichinonă , care este eliberată în membrană. Pentru fiecare molecula de NADH oxidata , complexul transporta patru protoni prin membrana .
Complexul I (NADH-dehidrogenaza) a fost izolat dintr-o serie de obiecte: mitocondrii de inimă de bovină , sfeclă de zahăr ( Beta vulgaris ), cartof ( Solanum tuberosum ), fasole ( Vicia faba ), Arabidopsis ( Arabidopsis thaliana ) și orez ( Oryza sativa ). ), precum și din mitocondriile ciupercii neurospore Neurospora crassa și membranele Escherichia coli ( Esherichia coli ) [2] .
La procariote , complexul I este format din 14 subunități principale care formează nucleul complexului, fără de care nu funcționează. Șapte subunități sunt extrem de hidrofobe și localizate în membrană, în timp ce șapte sunt relativ hidrofile situate în afara membranei. La eucariote, ca urmare a evoluției, complexul a fost acoperit cu o „blană” de aproximativ 30 de subunități auxiliare, numărul acestora putând varia în funcție de obiect. Astfel, la mamifere această enzimă este formată din 44 de subunități, în timp ce la ciuperca Yarrowia lipolytica este formată din 48 [3] . Ca urmare a acestei suprastructuri , greutatea moleculară a complexului I aproape sa dublat: de la ~550 kDa în bacterii la ~1 M Da în mitocondrii [4] .
Microscopia electronică a arătat că complexul I (de la bacterii și mitocondrii ) are o formă de L caracteristică. Din cauza acestei forme, precum și a suprafeței moleculare neobișnuite, parcă șifonate, complexul I a primit porecla de „pantof vechi” de la oameni de știință. „Talpa” hidrofobă este reprezentată de proteine înglobate în membrană, iar partea hidrofilă – „glezna” – este orientată spre matrice [2] .
Cele patru subunități ale modulului de legare a ubichinonei , împreună cu subunitățile părții membranare a enzimei, formează locul de legare a ubichinonei, unde interacționează cu clusterul de fier-sulf N2 , acceptă doi electroni și este redus la ubichinol . Clusterul N2, ultimul dintr-o serie de clustere prin care electronii sunt transferați de la NADH la ubichinonă, este ridicat deasupra membranei cu ~15 Å . Cavitatea în sine, în care se leagă ubichinona, are o lungime de 30 Å și poate găzdui întreaga moleculă împreună cu o coadă hidrofobă lungă de șapte unități de izopren . Cavitatea are o intrare îngustă, astfel încât lanțul hidrofob lung este forțat să adopte o anumită conformație, care se menține pe toată durata reacției enzimatice. Prezența unui sit de legare atât de lung și îngust este o trăsătură caracteristică complexului I. În interiorul cavității, ubichinona interacționează cu reziduurile conservate de tirozină și histidină [ 5] .
La ciuperci, animale și plante vasculare, cel puțin șapte din cele 44 de subunități care formează domeniul membranar sunt codificate de genomul mitocondrial [6] . Mamiferele au exact șapte dintre aceste subunități [7] [8] . La plante , ADN-ul mitocondrial codifică nouă subunități: în plus față de cele șapte subunități care fac parte din partea hidrofobă a complexului, codifică două subunități care sunt omoloage subunităților de 49 kDa și 30 kDa ale mamiferelor, iar componentele rămase sunt sub controlul genelor nucleare [2] . Cu toate acestea, aceste date de la cartofi și plastomi Arabidopsis pot să nu fie valabile pentru alte specii de plante, iar numărul de subunități codificate în mitocondrii poate varia de la specie la specie. Astfel, la hepatica Marchantia polymorpha , subunitatea NAD7 , omoloagă polipeptidei de 49 kDa , este codificată de genomul nuclear și transportată în mitocondrii, iar gena ADN mitocondrială corespunzătoare s-a transformat într-o pseudogenă și nu este funcțională [9] .
Studiile au arătat că complexul I nu diferă semnificativ în proprietățile sale la obiectele de origine animală și vegetală [2] . Cu toate acestea, plantele au unele subunități specifice care în unele cazuri duc la caracteristici funcționale. Analiza complexului I la Arabidopsis arată că mai mult de 30% din subunități sunt specifice plantei [10] . De exemplu, o parte a modulului membranar al complexului vegetal I este așa-numitul modul structural γ-carboanhidrază și L-galacton-1,4-lactonă dehidrogenază, care, în același timp, este ultima enzimă a căii mitocondriale a acidului ascorbic. biosinteză [11] .
Subunități de bază [4] [12] [5] | ||||||
---|---|---|---|---|---|---|
Vacă | Uman | coli | Arabidopsis | Descriere | Cofactori | |
brațul periferic | ||||||
Modul de dehidrogenază | 75 kDa | NDUFS1 | NuoG | 75 kDa | transportul de electroni | Fe 2 S 2 (N1b), 2 x Fe 4 S 4 (N4 și N5), (N7) [a 1] |
51 kDa | NDUFV1 | NuoF | 51 kDa | Legarea NADH, transportul de electroni | flavină , Fe 4 S 4 (N3) | |
24 kDa | NDUFV2 | NuoE | 24 kDa | Poartă grupul auxiliar N1a | Fe 2 S 2 (N1a) | |
Modul de legare a ubichinonei | 49 kDa | NDUFS2 | NuoD (NuoCD) [a 2] | NAD7 | ||
30 kDa | NDUFS3 | NuoC | NAD9 | |||
TYKY | NDUFS8 | NuoI | 28,5 kDa | transportul de electroni | 2 x Fe 4 S 4 (N6a și N6b) | |
PSST | NDUFS7 | NuoB | 20 kDa | transportul de electroni | Fe 4 S 4 (N2) | |
Braț de membrană | ||||||
- | ND1 | MT-ND1 | NuoH | NAD1 | ||
Modulul de translocare a protonilor | ND2 | MT-ND2 | NuoN | NAD2 | proteină asemănătoare antiporterului | |
ND3 | MT-ND3 | NuoA | NAD3 | |||
ND4 | MT-ND4 | NuoM | NAD4 | proteină asemănătoare antiporterului | ||
ND4L | MT-ND4L | NuoK | NAD4L | |||
ND5 | MT-ND5 | NuoL | NAD5 | proteină asemănătoare antiporterului | ||
ND6 | MT-ND6 | NuoJ | NAD6 |
Toate complexele mitocondriale I au multe subunități suplimentare care nu sunt esențiale pentru activitatea catalitică și diferă între specii. Evident, ele poartă o anumită sarcină funcțională, deoarece mutațiile din ele duc la boli congenitale . Pentru unele subunități s-a demonstrat prezența anumitor funcții, de exemplu, B16.6 (GRIM-19) este implicată în apoptoză , iar subunitatea de 39 kDa (NDUFA9) este implicată în reglarea activității complexului [13]. ] . În ceea ce privește subunitățile rămase, rolul lor posibil în reglarea, asamblarea, stabilizarea și protecția împotriva speciilor reactive de oxigen este acum discutat activ . Trebuie menționat că subunitățile suplimentare cresc semnificativ costurile energetice ale celulei pentru sinteza , asamblarea și degradarea complexului. Astfel de costuri, însă, pot plăti în cazul unei celule eucariote în care procesul de sinteză a proteinelor este bine controlat și în acest sens perfecționat. Pe de altă parte, dacă sunt necesare subunități accesorii pentru a stabiliza complexul I, rămâne neclar modul în care complexele bacteriene, care constau din cantitatea minimă necesară de polipeptide, funcționează cu succes fără ele. Momentan, oamenii de știință nu au un răspuns clar la aceste întrebări [5] .
Subunități accesorii [4] [12] [5] [14] | ||||
---|---|---|---|---|
Nu. | Vacă | proteine umane | Descriere | Familia de proteine Pfam |
Subunități | ||||
cincisprezece | 13A | NDUFS6 | participă la asamblare și stabilizează complexul | Pfam PF10276 |
16 | B17.2 | NDUFA12 | Pfam PF05071 | |
17 | AQDQ | NDUFS4 | eventual fosforilat de PKA , stabilizează complexul în timpul asamblării |
Pfam PF04800 |
optsprezece | 39 kDa | NDUFA9 | conectează membrana și domeniile periferice, participă la activarea/dezactivarea complexului |
Pfam PF01370 |
19 | ACPM | ACPM_UMAN | proteină purtătoare de acil | Pfam PF00550 |
douăzeci | B8 | NDUA2_UMAN | Pfam PF05047 | |
21 | MFWE | NDUFA1 | fosforilarea PKA dependentă de cAMP | Pfam PF15879 |
22 | B12 | NDUFB3 | Pfam PF08122 | |
23 | AB13 | NDUFA5 | participă la activarea/dezactivarea complexului | Pfam PF04716 |
24 | B14 | NDUFA6 | Pfam PF05347 | |
25 | B14.7 | NDUFA11 | Pfam PF02466 | |
26 | ESSS | NDUFB11 | fosforilarea PKA dependentă de cAMP | Pfam PF10183 |
27 | PFFD | NDUFS5 | Pfam PF10200 | |
28 | B15 | NDUFB4 | Pfam PF07225 | |
29 | B16.6 | NDUFA13 | implicat în apoptoză | Pfam PF06212 |
treizeci | B18 | NDUFB7 | Pfam PF05676 | |
31 | PGIV | NDUFA8 | Pfam PF06747 | |
32 | B22 | NDUFB9 | Pfam PF05347 | |
33 | PDSW | NDUFB10 | fosforilată de Src în celulele canceroase | Pfam PF10249 |
34 | ASHI | NDUFB8 | Pfam PF05821 | |
35 | B14.5B | NDUFC2 | în mod normal fosforilat. | Pfam PF06374 |
36 | AGGG | NDUFB2 | Pfam PF14813 | |
37 | B14.5A | NDUFA7 | în mod normal fosforilat. | Pfam PF07347 |
38 | B9 | NDUFA3 | Pfam PF14987 | |
39 | MLRQ [a 3] | NDUA4_UMAN | Pfam PF06522 | |
40 | SGDH | NDUFB5 | Pfam PF09781 | |
41 | MNLL | NDUFB1 | Pfam PF08040 | |
42 | KFYI | NDUFC1 | în mod normal fosforilat. | Pfam PF15088 |
43 | 42 kD | NDUFA10 | Pfam PF01712 | |
44 | NDUFA4L2 | NDUFA4L2 | Pfam PF15880 | |
45 | NDUFV3 | NDUFV3 | - | |
46 | NDUFB6 | NDUFB6 | Pfam PF09782 | |
Proteine auxiliare care realizează asamblarea [15] | ||||
47 | NDUFAF1 [a 3] | CIA30_UMAN | factor de asamblare complex 1 | Pfam PF08547 |
48 | NDUFAF2 | MIMIT_UMAN | factor de asamblare complex 2 | Pfam PF05071 |
49 | NDUFAF3 | NDUF3_UMAN | factor de asamblare complex 3 | Pfam PF05071 |
cincizeci | NDUFAF4 | NDUF4_UMAN | factor de asamblare complex 4 | Pfam PF06784 |
Unele subunități suplimentare sunt fosforilate de diferite kinaze , ceea ce nu se întâmplă niciodată cu subunitățile de bază. Se presupune că în acest fel are loc reglarea funcționării complexului. Ca una dintre subunitățile din complex, există o proteină purtătoare de acil (NDUFAB1) cu acid pantotenic fosforilat ca grup protetic . Se crede că este implicat în sinteza acidului lipoic , repararea lipidelor membranei deteriorate sau modifică alte proteine cu reziduuri de acid miristic . Trebuie remarcat faptul că funcționarea acestei proteine nu depinde de contactul fizic direct cu complexul I, iar o parte semnificativă a acesteia este prezentă sub formă liberă în interiorul matricei mitocondriale [14] .
Toate grupele protetice ale complexului NADH dehidrogenază (o mononucleotidă de flavină și 8 până la 9 clustere de fier-sulf ) sunt situate în domeniul periferic solubil în apă. Mamiferele, ca toate vertebratele , au opt [7] . Șapte clustere formează un lanț de transport de electroni lung de ~96 Å de la FMN la locul de legare a ubichinonei . Pe baza datelor actuale, se crede că transferul de electroni are loc pe următoarea cale: NADH → FMN → N3 → N1b → N4 → N5 → N6a → N6b → N2 → Q. În primul rând, doi electroni sunt transferați la flavină și apoi ei sunt transferate unul câte unul prin grupurile de lanț la locul de legare a chinonei și o reduc la starea Q- 2 . Clusterul N1a este situat în apropierea cofactorului de flavină și la o oarecare distanță de lanțul principal de transport de electroni. Acest cluster este foarte conservat între specii ; se crede că controlează viteza de transport de electroni în cadrul complexului prin transferul unui electron din FMN [4] . Există un model conform căruia unul dintre electronii din flavină merge pe calea principală către chinonă, în timp ce celălalt este stocat în clusterul N1a și mai târziu revine în lanțul principal prin flavosemichinonă. Este posibil ca acest mecanism să facă posibilă reducerea formării de specii reactive de oxigen pe flavina redusă. În plus, permite stabilizarea (până la o milisecundă ) a stării când ultimul cluster de N2 este restaurat, dar nu există un al doilea electron pentru a finaliza reducerea ubichinonei. O astfel de stare poate fi necesară pentru modificările conformaționale asociate cu transportul de protoni.
Unele dintre clusterele din lanț (N3, N4 și N6a) au un potențial redox ridicat (potențial redox) la nivelul de –0,25 V , în timp ce altele trei (N1b, N5 și N6b) au potențiale mai mici. Ca rezultat, potențialul redox pe calea electronului se schimbă ca un rollercoaster . O astfel de curbă de schimbare a stării energetice este caracteristică multor enzime redox : permite optimizarea ratei de transport de electroni și realizarea unui transfer eficient de energie [4] .
Clusterul N5 are un potențial foarte scăzut și limitează rata fluxului total de electroni în întregul circuit. În loc de liganzii obișnuiți pentru centrii fier-sulf (patru reziduuri de cisteină ), este coordonat de trei reziduuri de cisteină și un rest de histidină și este, de asemenea, înconjurat de reziduuri polare încărcate, deși este localizat adânc în enzimă . 4] .
Clusterul terminal al lanțului, N2, are, de asemenea, liganzi neobișnuiți . Potențialul său redox este cel mai mare dintre toate clusterele (de la -0,1 la -0,15 V). Este asociat cu patru reziduuri consecutive de cisteină în lanțul polipeptidic, care creează o conformație tensionată. Din această cauză, atunci când este restaurat, apar modificări conformaționale în lanțurile învecinate, posibil asociate cu transportul de protoni [4] .
Clusterul N7 este prezent numai în complexul I al unor bacterii. Este îndepărtat semnificativ din restul clusterelor și nu poate face schimb de electroni cu ele, așa că, aparent, este o relicvă . În unele complexe bacteriene legate de complexul I, s-au găsit patru reziduuri de cisteină conservate între N7 și alte clustere, iar un cluster Fe 4 S 4 suplimentar care leagă N7 cu clusterele rămase a fost găsit în complexul I al bacteriei Aquifex aeolicus . Aceasta duce la concluzia că în A. aeolicus complexul I, pe lângă NADH, poate folosi un alt donor de electroni, care îi transferă prin N7 [18] .
Complexul mitocondrial I se formează cu complexele respiratorii III și IV supercomplexe numite respirazomi . În mitocondriile mamiferelor și oamenilor, aproximativ 90% din complex este localizat în respirazom. S-a demonstrat, de asemenea, pe mitocondriile din rizomii tineri de bambus că 90% din cantitatea totală de complex I este asamblată în respirazomi, iar în Arabidopsis , în supercomplexul I-III 2 [19] . Există dovezi ample că prezența respirazomilor este necesară pentru stabilitatea și funcționarea complexului I, care este instabil în absența complexelor III sau IV. De exemplu, în celulele umane mutante , s-a demonstrat că complexul I este necesar pentru formarea complexului III și, pe de altă parte, pierderea complexului III duce la pierderea complexului I. În plus, un număr de animale studiile pe celule oferă dovezi că complexul I este necesar pentru complexele de stabilitate IV și un dimer al complexului III.
Recent, s-a arătat în cultura de celule umane că complexele IV și III sunt necesare pentru asamblarea unui complex I complet, în timp ce complexul incomplet asamblat în sine servește ca bază pentru formarea respiraselor. Prezența complexelor IV și III în respirazom este necesară pentru atașarea subunităților catalitice ale modulului NADH dehidrogenază la complexul I, care activează complet complexul și întregul respirazom [20] .
Complexul NADH dehidrogenază oxidează NADH format în matrice în timpul ciclului acidului tricarboxilic . Electronii din NADH sunt folosiți pentru regenerarea transportorului membranar, ubichinona Q, care îi transportă la următorul complex al lanțului de transport de electroni mitocondrial , complexul III sau complexul citocrom bc 1 [ 21] .
Complexul NADH-dehidrogenază funcționează ca o pompă de protoni : pentru fiecare NADH oxidat și Q redus, patru protoni sunt pompați prin membrană în spațiul intermembranar [22] :
NADH + H + + Q + 4H + in → OVER + + QH 2 + 4H + outPotențialul electrochimic format în timpul reacției este utilizat pentru a sintetiza ATP . În mod curios, reacția catalizată de complexul I este reversibilă, un proces numit reducere NAD + indusă de succinat aerob . În condiții de potențial de membrană ridicat și un exces de ubichinoli reduse, complexul poate reduce NAD + folosind electronii lor și poate trece protonii înapoi în matrice. Acest fenomen este observat de obicei atunci când există mult succinat, dar puțin oxalacetat sau malat . Reducerea ubichinonei este realizată de enzimele succinat dehidrogenază , glicerol-3-fosfat dehidrogenază sau dihidroorotat dehidrogenază mitocondrială . În condițiile unui gradient de protoni ridicat , afinitatea complexului pentru ubichinol crește, iar potențialul redox al ubichinolului scade datorită creșterii concentrației sale, ceea ce face posibil transportul invers al electronilor de -a lungul potențialului electric al membranei mitocondriale interioare către NAD [23] . Acest fenomen a fost observat în condiții de laborator, dar nu se știe dacă apare într-o celulă vie.
La etapele inițiale ale studiului complexului I, un model bazat pe presupunerea că un sistem similar cu un ciclu Q funcționează în complex . Cu toate acestea, studiile ulterioare nu au găsit nicio chinonă legată intern în complexul I și au respins complet această ipoteză [24] .
Complexul NADH dehidrogenază pare să aibă un mecanism unic de transport de protoni prin modificări conformaționale ale enzimei în sine. Subunitățile ND2, ND4 și ND5 sunt numite antiport , deoarece sunt omoloage între ele și cu antiporturile bacteriene Mrp Na + /H + . Aceste trei subunități formează cele trei canale principale de protoni, care sunt alcătuite din reziduuri de aminoacizi încărcate conservate (în principal lizină și glutamat ). Al patrulea canal de protoni este format din o parte a subunității Nqo8 și a subunităților mici ND6, ND4L și ND3. Canalul este similar ca structură cu canale similare de subunități asemănătoare antiport, dar conține un număr neobișnuit de mare de reziduuri de glutamat dens împachetate pe partea matricei, de unde și denumirea de canal E (latina E este folosită ca denumire standard pentru glutamat). O extensie se extinde de la capătul C-terminal al subunității ND5, constând din două elice transmembranare α conectate printr-o elice α neobișnuit de lungă (110 Å) [4] (HL), care, trecând de-a lungul lateralului complex orientat spre matrice, conectează fizic toate cele trei subunități asemănătoare antiportului și poate fi implicat în cuplarea transportului de electroni cu rearanjarea conformațională. Un alt element de conjugare, βH, este format dintr-o serie de ace de păr β și elice α suprapuse și este situat pe partea opusă, periplasmatică a complexului [25] .
Încă nu se știe exact cum este cuplat transportul de electroni cu transportul de protoni. Se crede că sarcina negativă puternică a clusterului N2 poate împinge polipeptidele din jur în afară, provocând astfel modificări conformaționale care se propagă cumva la toate subunitățile asemănătoare antiportului situate destul de departe una de cealaltă. O altă ipoteză sugerează că schimbarea conformațională induce ubichinol Q-2 stabilizat cu un potențial redox extrem de scăzut și sarcină negativă în situsul de legare a ubichinonei neobișnuit de lung . Multe detalii ale cineticii modificărilor conformaționale și ale transportului de protoni asociat rămân necunoscute [25] .
Complexul eucariotic NADH dehidrogenază există în două forme distincte: una complet funcțională, așa-numita formă activă sau A, și o a doua, inactivă catalitic sau formă D. Dacă enzima este menținută la temperaturi ridicate, dar totuși fiziologice (> 30 °C) în absența unui substrat , enzima se schimbă în forma D. Este inactiv catalitic, dar poate fi activat de un substrat (NADH și ubichinonă, în care electronii pot fi aruncați). După unul sau mai multe cicluri enzimatice, complexul devine activ și viteza de reacție crește. O astfel de tranziție se găsește numai la vertebrate și ciuperci , dar nu și la nevertebrate sau bacterii . Complexele de plante nu au fost studiate. În prezența cationilor divalenți (Mg 2+ , Ca 2+ ) sau în pH alcalin , activarea durează mult mai mult, iar acidul palmitic liber crește foarte mult frecvența trecerii de la forma activă la forma dezactivată [26] .
Complexul I de la bovine și Yarrowia lipolitica |
Energia mare de activare (270 kJ/mol) a tranziției de la forma A la forma D indică faptul că în complex are loc o rearanjare conformațională semnificativă. Până acum, singura diferență identificată între cele două forme este numărul de reziduuri de cisteină de pe suprafața enzimei. Conform datelor recente, în acest proces sunt implicate subunități situate în apropierea site-ului de legare a chinonei: 39 kDa, ND3 și ND1 [26] . Tratarea formelor D ale complexului I cu reactivi speciali ( N-ethylmaleimidă sau reactivul Ellman ) blochează ireversibil aceste reziduuri importante de cisteină, făcând imposibilă reactivarea enzimei. În mod curios, forma A a complexului I este insensibilă la sulfhidrili , ceea ce indică faptul că reziduurile de cisteină sunt îngropate adânc în proteină. La rândul său, forma dezactivată este susceptibilă de a fi inhibată de nitrozotioli și peroxinitrit [27] .
Modificările conformaționale în complexul I sunt de mare importanță fiziologică . După hipoxie , restabilirea nivelurilor de oxigen poate duce la o creștere a oxidării NAD(P)H și la generarea de specii reactive de oxigen, care pot deteriora mitocondriile și pot provoca necroza tisulară . Trecerea de la forma activă la forma inactivă a complexului are loc în condiții patologice, atunci când numărul de rotații ale enzimei este redus la temperatura normală, fiziologică a corpului, de exemplu, în timpul hipoxiei , ischemiei sau creșterii raportului nitric . oxid (NO) / oxigen în țesuturi (așa-numita hipoxie metabolică). În acest fel, complexul I previne oxidarea complexelor respiratorii rămase atunci când nivelurile de oxigen sunt restabilite. În plus, forma inactivă nu este capabilă de transport invers de electroni, ceea ce reduce formarea ROS [28] [26] .
Complexul NADH-dehidrogenază aparține familiei de oxidoreductaze membranare din clasa NiFe-hidrogenazelor , care în bacteriile anaerobe și arheile cuplează reacția de oxidare a substratului și reducerea hidrogenului cu transportul de protoni. Pe baza datelor de omologie a proteinelor, se poate concluziona că complexul a apărut ca urmare a unirii a două complexe preexistente din familii de proteine diferite, neînrudite . Modulele de legare a NADH-dehidrogenazei și ubichinonei au provenit din NiFe-hidrogenază solubilă, care a oxidat NADH și a redus hidrogenul, în timp ce membrana hidrofobă care pompa protoni „piciorul” complexului provine din antiporturile Na + /H + Mrp [4] .
Fuziunea hidrogenazei solubile și a proteinelor antiport a condus la apariția unui număr mare de hidrogenaze și dehidrogenaze membranare, care ulterior ar putea evolua în complexul I. Structura tridimensională a acestor enzime este probabil similară cu cea a complexului I. Dehidrogenazele includ complexul arheal Fpo de 11 subunități, care oxidează cofactorul F 420 asociat cu hidrogenul și reduce metanofenazina (analog cu ubichinona), pompând un proton la doi electroni peste membrană. Această enzimă nu are un modul NADH dehidrogenază. Grupul de hidrogenaze include hidrogen formiat liazele din Escherichia coli : hidrogen formiat liaza-1 din șapte subunități și hidrogen formiat liaza-2 din zece. Ambele enzime oxidează formiatul prin reducerea hidrogenului cu transferul mai multor protoni prin membrană [18] .
Cea mai simplă dintre proteinele legate de complexul I este Ech hidrogenaza ( hidrogenază de tip E. coli hidrogenază-3 ) a arheei Methanosarcina barkeri . Este format din doar șase subunități și pompează un proton ca urmare a oxidării ferredoxinei cu reducerea unei molecule de hidrogen. Ech conține setul minim de subunități (omoloage complexului I) necesare pentru cuplarea reacției de oxidare cu transportul de protoni [18] .
În plus, complexul I se găsește în cloroplaste ca complex cloroplast NADH dehidrogenază . Structura și funcțiile sale exacte sunt încă necunoscute [29] .
Complexul I în procesul de lucru formează specii reactive de oxigen [30] . Este de obicei superoxid (și, de asemenea, peroxid de hidrogen ) și se formează în cel puțin două moduri. În cursul transportului direct de electroni, în timpul respirației, se formează o cantitate foarte mică de superoxid (probabil mai puțin de 0,1% din fluxul total de electroni este transferat în oxigen ) [30] [31] .
În timpul transportului invers al electronilor, care are loc în condiții de reducere aerobă a NAD + indusă de succinat , complexul I poate deveni cel mai activ loc pentru formarea superoxidului: până la 5% din electroni merg la reducerea oxigenului [32] .
Superoxidul se formează în complexul NADH-dehidrogenază ca rezultat al transferului unui electron de la FMN H2 la O2 . Radicalul flavin rezultat este instabil și transferă electronul rămas în clusterele fier-sulf. Nivelul de formare a superoxidului este determinat de raportul NADH/NAD + ; în condițiile în care o cantitate mică de NAD este redusă, NAD + concurează cu succes pentru electroni cu oxigen [33] [34] .
Cel mai studiat inhibitor al complexului I este rotenona (folosită pe scară largă ca pesticid organic ). Rotenona și rotenoidele sunt izoflavonoide care sunt prezente în rădăcinile mai multor genuri de plante tropicale, cum ar fi Antonia ( Loganiaceae ), Derris și Lonchocarpus ( Fabaceae ). Rotenona a fost folosită mult timp ca insecticid și otravă pentru pești , deoarece mitocondriile insectelor și peștilor sunt deosebit de sensibile la acesta. Se știe că locuitorii indigeni din Guyana Franceză și alți indieni din America de Sud foloseau plante care conțineau rotenonă pentru pescuit încă din secolul al XVII-lea [35] . Rotenona interacționează cu locul de legare a ubichinonei și concurează cu substratul principal. S-a demonstrat că inhibarea sistemică pe termen lung a complexului I de către rotenonă poate induce moartea selectivă a neuronilor dopaminergici (secretă dopamină ca neurotransmițător ) [36] . În mod similar, pielicidina A , un alt inhibitor puternic al complexului I, este similar structural cu ubichinona. Această grupă include și amitalul de sodiu , un derivat al acidului barbituric [2] .
În ciuda a mai mult de 50 de ani de studiu al complexului I, nu s-au găsit inhibitori care blochează transferul de electroni în cadrul complexului. Inhibitorii hidrofobi precum rotenona sau pielicidina întrerup pur și simplu transferul de electroni de la clusterul terminal N2 la ubichinonă [36] .
Un alt compus care blochează complexul I este adenozin difosfat riboza , un inhibitor competitiv în reacția de oxidare a NADH. Se leagă de enzimă la locul de legare a nucleotidelor (FAD) [37] .
Unul dintre cei mai puternici inhibitori ai complexului I este familia acetogeninei . S-a demonstrat că aceste substanțe formează legături încrucișate chimice cu subunitatea ND2, ceea ce indică indirect rolul ND2 în legarea ubichinonei [38] . În mod curios, acetogenina rolliniastatin-2 a fost primul inhibitor al complexului I care a fost descoperit care se leagă la un alt situs decât rotenona [39] .
Medicamentul antidiabetic metformin are un efect inhibitor moderat ; aparent, această proprietate a medicamentului stă la baza mecanismului acțiunii sale [40] .
Mutațiile în genele subunității complexe I pot duce la boli mitocondriale , cum ar fi sindromul Leigh . Mutațiile punctuale în subunitățile mitocondriale ale acestui complex pot provoca, de asemenea , neuropatia optică a lui Leber . Există dovezi că defecte în structura complexului I pot juca un rol în etiologia bolii Parkinson , posibil datorită formării speciilor reactive de oxigen [41] . Astfel, s-a demonstrat că în culturile celulare ale pacienților cu boala Parkinson, scurgerea de protoni în complexul I este crescută, ceea ce reduce capacitatea respiratorie maximă [42] . La plante, mutații în complexul I au fost descrise la tutun ( Nicotiana silvestris ) și porumb ( Zea mays ): mutațiile au fost însoțite de patologia polenică și au condus la sterilitate citoplasmatică masculină [2] .
Studii recente au relevat un rol neobișnuit pentru complexul I în funcția creierului . Activitatea acestei enzime este redusă semnificativ la pacienţii cu tulburare bipolară , dar rămâne normală la pacienţii cu depresie sau schizofrenie . La pacienții cu tulburare bipolară s-a observat creșterea oxidării proteinelor și a nitrației în cortexul prefrontal . Aceste rezultate fac din complexul I o țintă pentru viitoare cercetări terapeutice în tulburarea bipolară [43] [44] .
Expunerea la pesticide care blochează complexul I poate avea consecințe de amploare. De exemplu, expunerea prelungită la concentrații scăzute de organofosfat și pesticidul diclorvos cauzează disfuncție hepatică . Diclorvos modifică activitatea complecșilor I și II, ceea ce duce la o încetinire a transportului de electroni și o scădere a sintezei ATP [45] .
Dovezile din numeroase studii sugerează că mitocondriile, și în special complexele I și II, joacă un rol cheie în procesele care afectează îmbătrânirea și durata de viață [46] [47] [48] [49] . Se presupune că încetinirea sintezei și reîncărcării proteinelor în timpul îmbătrânirii duce la o defecțiune a stoichiometriei subunităților respiratorii. Aceasta, la rândul său, provoacă o încălcare a eficienței funcționării complexului I și o creștere a stresului oxidativ mitocondrial , care este cel mai pronunțat în țesutul muscular [50] .
Inserarea unei alternative NADH dehidrogenazei de drojdie Ndi1 , constând dintr-o singură subunitate, în plus față de complexul I, în genomul Drosophila a condus la restabilirea nivelului normal de oxidare intramitocondrială a NADH și o prelungire semnificativă a vieții acestei muște, indiferent de restricția calorică a dietei sale [51] .